اثر غلظت‏های مختلف سرب بر برخی پارامترهای فیزیولوژیکی در دو جمعیت از گیاه اسپند (Peganum harmala L.)

سال انتشار: 1394
نوع سند: مقاله ژورنالی
زبان: فارسی
مشاهده: 289

فایل این مقاله در 13 صفحه با فرمت PDF قابل دریافت می باشد

استخراج به نرم افزارهای پژوهشی:

لینک ثابت به این مقاله:

شناسه ملی سند علمی:

JR_JCT-6-4_010

تاریخ نمایه سازی: 2 دی 1399

چکیده مقاله:

هدف: هدف از مطالعه حاضر بررسی اثر غلظت‌های سرب بر رشد و میزان آنتوسیانین، کلروفیل، کاروتنوئید، قندهای محلول، قندهای احیاء و آمینو اسیدهای آزاد در جمعیت‌هایی از گیاه اسپند می‌باشد. مواد و روش‌ها: گیاهانی از دو جمعیت مختلف اسپند (فلز دوست منطقه کوشک یزد و غیر فلز دوست منطقه کرمان) در شرایط هیدروپونیک کشت داده شدند. سپس گیاهان به‏مدت 14 روز تحت تیمار غلظت‌های 0، 5، 10، 25 و 50 میلی‌گرم در لیتر سرب قرار گرفتند. در پایان آزمایش میزان پارامترها توسط اسپکتروفتومتر اندازه‌گیری و محاسبه شد. نتایج: نتایج نشان دادند که افزایش غلظت سرب در محلول غذایی باعث کاهش طول ریشه گیاهان می‌شود و بین دو جمعیت تفاوت معنی‏داری وجود دارد. به‏طور کلی میزان رنگیزه‌های کلروفیل و کاروتنوئید تحت غلظت‌های سرب، به‏ویژه تحت بالاترین تیمار سرب (50 میلی‌گرم در لیتر) در هر دو جمعیت کاهش یافتند. همچنین میزان آنتوسیانین، قندهای محلول و آمینواسیدهای آزاد در هر دو جمعیت افزایش یافتند. نتیجه گیری: مقادیر بالاتر آنتوسیانین، قندهای محلول و آمینواسیدهای آزاد در جمعیت فلز دوست، نشان دهنده ظرفیت بهتر مقاومت به سرب در این جمعیت است.

نویسندگان

کبری مهدویان

دانشگاه اصفهان، دانشکده علوم، گروه زیست شناسی، اصفهان، ایران

مجید قادریان

دانشگاه اصفهان، دانشکده علوم، گروه زیست شناسی، اصفهان، ایران

مسعود ترکزاده ماهانی

دانشگاه تحصیلات تکمیلی و فناوری پیشرفته کرمان، پژوهشگاه علوم و تکنولوژی پیشرفته و علوم محیطی، گروه بیوتکنولوژی، کرمان، ایران

مراجع و منابع این مقاله:

لیست زیر مراجع و منابع استفاده شده در این مقاله را نمایش می دهد. این مراجع به صورت کاملا ماشینی و بر اساس هوش مصنوعی استخراج شده اند و لذا ممکن است دارای اشکالاتی باشند که به مرور زمان دقت استخراج این محتوا افزایش می یابد. مراجعی که مقالات مربوط به آنها در سیویلیکا نمایه شده و پیدا شده اند، به خود مقاله لینک شده اند :
  • 1. Seregin IV, Ivaniov VB. Physiological aspects of cadmium and ...
  • 2. Sharma P, Dubey RS. Lead toxicity in plants. Braz ...
  • 3. Burzynski M. The influence of lead and cadmium on ...
  • 4. Drazkiewiez M. Chlorophyll-occurrence, functions, mechanism of action, effects of ...
  • 5. Piotrowska A, Bajguz A, Godlewska-Z-Ylkiewicz B, Zambrzycka EB. Changes ...
  • 6. Reddy AM, Kumar SG, Jyonthsnakumari G, Thimmanaik S, et ...
  • 7. Verma S, Dubey RS. Lead toxicity induces lipid peroxidation ...
  • 8. Meier H, Reid J.S. Reserve polysaccharides other than starch ...
  • 9. Prado FE, Boero C, Gallarodo M, Gonzalez JA. Effect ...
  • 10. Pascual-Teresa S, Sanchez-Ballesta MT. Anthocyanins: from plant to health. ...
  • 11. Boulton R. The copigmentation of anthocyanins and its role ...
  • 12. Ayala-Silva T, Al-Hamdani SH. Interactive effects of polylactic acid ...
  • 13. Gardner JL, Al-Hamdani SH. Interactive effect of aluminum and ...
  • 14. Wilson G, Al-Hamdani SH. Effects of chromium (VI) and ...
  • 15. Mohtadi A, Ghaderian SM. Evaluation of auxin (IAA) and ...
  • 16. Dubois M, Gilles K, Hamilton J, Rebers P, et ...
  • 17. Jeffries TW, Yang VW, Davis MW. Comparative study of ...
  • 18. Wagner GJ. Content and vacuole/extravacuole distribution of neutral sugars, ...
  • 19. Lichtenthaler H.K. Chlorophylls and carotenoids: Pigments of photosynthetic biomembranes. ...
  • 20. Hwang M, Ederer GM. Rapid hippurate hydrolysis method for ...
  • 21. Baker A.J.M, Mc Grath S.P, Reeves R.D, Smith J.A.C. ...
  • 22. Sekhar KC, Kamala CT, Chary NS, Balaram V, et ...
  • 23. Han YL, Huang SZ, Gu JG, Qiu S, et ...
  • 24. Sayed SA. Effects of lead and kinetin on the ...
  • 25. Joseph LU, Andrea LC, Tarun KM. Effects of lead ...
  • 26. Archambault CJ, Winterhalder K. Metal tolerance in Agrostis scabra ...
  • 27. Baker AJM, Walker PL. Ecophysiology of metal uptake by ...
  • 28. Almeida AF, Valle AA, Mielke MS, Gomes FP, et ...
  • 29. Huang JW, Cunningham SD. Lead phytoextraction: species variation in ...
  • 30. Piechalak A, Tomaszewaska B, Baralkiewisaz D. Accumulation and detoxification ...
  • 31. Yang Y, Jung J, Song W, Sun H, et ...
  • 32. Mohtadi A, Ghaderian SM, Shat H. A comparison of ...
  • 33. Pourrut B, Shahid M, Dumat C, Winterton P, et ...
  • 34. Cheng S. Effect of heavy metals on plants and ...
  • 35. Patra M, Bhowmik N, Bandopadhyay B, Sharma A. Comparison ...
  • 36. Gupta DK, Nicoloso FT, Schetinger MRC, Rossato LV, et ...
  • 37. Aldoobie NF, Beltagi MS. Physiological, biochemical and molecular responses ...
  • 38. Wang P, Zhang S, Wang C, Lu J. Effects ...
  • 39. Akinci IE, Akinci S, Yilmaz K. Response of tomato ...
  • 40. Shu X, Yin LY, Zhang QF, Wang WB. Effect ...
  • 41. Doong RL, MacDonald GE, Shilling DG. Effect of fluoridone ...
  • 42. Kumar A, Prasad MNV, Sytar O. Lead toxicity, defense ...
  • 43. Baker A.J.M, McGrath S.P, Reeves R.D, Smith J.A.C. Metal ...
  • 44. Dubey R.S. Photosynthesis in plants under stressfull conditions.In:Pessarakli, M.(eds) ...
  • 45. Dubey RS, Singh AK. Salinity induces accumulation of soluble ...
  • 46. Hurry VM, Strand Å, Tobiæson M, Gardeström P, et ...
  • 47. Verma S, Dubey RS. Effect of cadmium on soluble ...
  • 48 . Gubrelay U, Agnihotri RK, Singh G, Kaurl R, ...
  • نمایش کامل مراجع