اثر نانو ذرات اکسیدآهن بر رشد و فیزیولوژی گیاه یونجه (Medicago sativa L) تلقیح یافته با Rhizobium meliloti

سال انتشار: 1399
نوع سند: مقاله ژورنالی
زبان: فارسی
مشاهده: 280

فایل این مقاله در 19 صفحه با فرمت PDF قابل دریافت می باشد

استخراج به نرم افزارهای پژوهشی:

لینک ثابت به این مقاله:

شناسه ملی سند علمی:

JR_JCT-11-1_003

تاریخ نمایه سازی: 2 دی 1399

چکیده مقاله:

هدف: هدف از این مطالعه بررسی اثر برهم‌کنش تلقیح باکتریایی و تیمار آهن (نانو و کلات‌آهن) بر خصوصیات فیزیولوژیکی یونجه می‌باشد. مواد و روش‏ها: در این مطالعه اثرات تلقیح Rhizobium melilotiسویه استاندارد، غلظت‌های مختلف آهن (کلات آهن، ٠، ٥، ۱٠، ٢٠ و ٢٥ میکرومولار نانو ذرات اکسیدآهن) و اثر متقابل تلقیح باکتریایی و تیمار آهن به‏مدت ٤٥ روز بر گیاه یونجه در قالب آزمایشات فاکتوریل در یک طرح کاملا تصادفی در سه تکرار مطالعه شده است. صفات مورد ارزیابی شامل شاخص‌های رشد، مقدار رنگیز‌ه‌های فتوسنتزی، پروتئین، پرولین، فعالیت آنتی‌اکسیدانت‏ها، درصد فعالیت بازدارندگی رادیکال دی‌فنیل‌پیکریل‌هیدرازیل (DPPH) و مقدار عناصر بودند. نتایج: تلقیح ریزوبیومی به‏تنهایی اثرات سودمندی بر رشد یونجه نشان داد و باعث افزایش پارامترهای رشد، رنگیزه‌ها، میزان پروتئین و جذب پتاسیم و فسفر شد اما بر مقدار پرولین و آنتی‌اکسیدانت‌ها اثری نداشت. تیمار آهن بر پارامترهای رشد، رنگیزه‌ها، میزان پروتئین و جذب عناصر اثر مثبت داشت. بیشترین شاخص‌های رشد در غلظت 25 میکرومولار نانوآهن مشاهده شد. بیشترین مقدار پرولین و فعالیت آنتی‌اکسیدانتی در شاهد (μM 0 نانوآهن) سنجش شد. از این‌رو این غلظت برای گیاه یونجه تنش محسوب می‌شود. اثرات منفی ناشی از تیمار 0 میکرومولار نانوآهن بر گیاه یونجه تلقیح‌یافته با ریزوبیوم ملیلوتی کاهش یافت. در واقع ریزوبیوم با کاهش شرایط تنش باعث افزایش مقاومت گیاهان تلقیح‌یافته می‌شود. نتیجه‏گیری: هم‏زیستی ریزوبیوم-یونجه همراه با نانوکود آهن علاوه بر افزایش رشد گیاه می‌تواند باعث افزایش مقاومت گیاه نسبت به تنش‌ها ‌شود. بیشترین مقدار پارامترهای رشد، رنگیزه‌ها و پروتئین در گیاهان تلقیح‌یافته با ریزوبیوم ملیلوتی و 10 میکرومولار نانوآهن اندازه‌گیری شد.  

نویسندگان

مهری عسکری

- دانشگاه اراک، دانشکده علوم پایه، گروه زیست شناسی، اراک، ایران

سید مهدی طالبی

- دانشگاه اراک، دانشکده علوم پایه، گروه زیست شناسی، اراک، ایران

معصومه شفیعی گواری

- دانشگاه اراک، دانشکده علوم پایه، گروه زیست شناسی، اراک، ایران

مراجع و منابع این مقاله:

لیست زیر مراجع و منابع استفاده شده در این مقاله را نمایش می دهد. این مراجع به صورت کاملا ماشینی و بر اساس هوش مصنوعی استخراج شده اند و لذا ممکن است دارای اشکالاتی باشند که به مرور زمان دقت استخراج این محتوا افزایش می یابد. مراجعی که مقالات مربوط به آنها در سیویلیکا نمایه شده و پیدا شده اند، به خود مقاله لینک شده اند :
  • 1. Delic D, Stajkovic-Srbinovic O, Radovic J, Kuzmanovic D. et ...
  • 2. Laranjo M, Alexandre A, Oliveira S. Legume growth-promoting rhizobia: ...
  • 3. Pesakovic M, Karaklajic-Stajic Z, Milenkovic S, Mitrovic O. Biofertilizer ...
  • 4. Thomine S, Vert G. Iron transport in plants: better ...
  • 5. Niranjana SR, Hariprasad P. Understanding the mechanism involved in ...
  • 6. Roosta HR, Jalali M, Vakili Shahrbabaki MA. Effect of ...
  • 7. Tian H, Kah M, Kariman Kh. Are Nanoparticles a ...
  • 8. McKee MS, Filser J. Impacts of metal-based engineered nanomaterials ...
  • 9. Hatami M, Kariman K, Ghorbanpour M. Engineered nanomaterial-mediated changes ...
  • 10. Kah M, Kookana RS, Gogos A, Bucheli TD. A ...
  • 11. Asadishad B, Chahal S, Akbari A, Cianciarelli V. et ...
  • 12. Karunakaran G, Suriyaprabha R, Manivasakan P, Yuvakkumar R. et ...
  • 13. Burke DJ, Pietrasiak N, Situ SF, Abenojar EC, et ...
  • 14. Sarabia-Castillo CR, Fernández-Luqueño F.  TiO2, ZnO, and Fe2O3 Nanoparticles ...
  • 15. Molla AH, Shamsuddin ZH, Halimi MS, Morziah M, et ...
  • 16. Caetano-Anolles G, Wall LG, De Micheli AT, Macchi EM, ...
  • 17. Bai Y, Zhou X, Smith DL. Crop ecology, management ...
  • 18. Askary M, Talebi SM, Amini F, dousti balout bangan ...
  • 19. Prasad TNV, Sreeprasad TS, Sajanlal PR, Pradeep T. Effect ...
  • 20. Dokhe SA, Mahajan P, Kamble R, Khanna A. Effect ...
  • 21. Holt JG, Kreig NR, Sneath PHA, Staley JT, et ...
  • 22. Arnon DI. Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenoloxidase in ...
  • 23. Lichtenthaler HK, Wellburn AR. Determinations of total carotenoids and ...
  • 24. Bates LS, Waldren RP. Teare Rapid determination of free ...
  • 25. Bradford MM. A rapid and sensitive method for the ...
  • 26. Abe N, Murata T, Hirota A. Novel 1,1-diphenyl-2-picryhy-drazyl- radical ...
  • 27. Giannopolitis CN, Ries SK. Superoxide dismutases: I. occurrence in ...
  • 28. Cakmak I, Marschner H. Manesium deficiency and high light ...
  • 29. Polle A, Otter T, Seifert F. Apoplastic peroxidases and ...
  • 30. Wang BS, Zhao KF. Comparison of extractive methods of ...
  • 31. Kohler J, Caravaca F, Roldan A. Interactions between a ...
  • 32. Celik MC, Tureli M, Celik Y, Yanar U, et ...
  • 33. Briat JF, Dubos C, Gaymard F. Iron nutrition, biomass ...
  • 34. Prasad R, Kumar M, Varma  A. Role of PGPR ...
  • 35- Khalid S, Asghar HN, Akhtar MJ, Aslam A, et ...
  • 36. Mohamadipoor R, Sedaghathoor S, Mahboub-Khomami A. Effect of application ...
  • 37. Jokar L, Ronaghi A, Karimian N, Ghasemi-Fasaei R. Effect ...
  • 38. Kokina I, Plaksenkova I, Jermajonoka M, Petrova A. Impact ...
  • 39. Askary m, Amirjani m, Saberi t. Comparison of the ...
  • 40. Pii Y, Penn A, Terzano R, Crecchio C, et ...
  • 41. Kallala N, Mۥsehli W, Jelali K, Kais Z. et ...
  • 42. Slatni T, Vigani G, Salah IB, Kouas S, et ...
  • 43. Bejandi T, Sharifi R, Sedghi M, Namvar A. Effects ...
  • 44. Sharma P, Kumawat KC, Kaur S. Plant growth promoting ...
  • 45. Bashan Y, Bustillos JJ, Leyva LA, Hernandez JP, et ...
  • 46. Peyvandi M, Parande H, Mirza M. Comparison of nano ...
  • 47. Verbruggen N, Hermans C. Proline accumulation in plants. Amino ...
  • 48- Rabie GH, Almadani AM. Role of bioinoculants in development ...
  • 49. Naveed M, Mehboob I, Hussain MB, Zahir ZA. perspective ...
  • 50. Rawashdeh HM, Florin S. Foliar application with iron as ...
  • 51. Kohler J, Antonio Hernandes J, Caravaca F, Roldan A. ...
  • 52. Foyer CH, Noctor G. Redox homeostis and antioxidant signaling: ...
  • 53. Yadav SK. Heavy metals toxicity in plants: An overview ...
  • 54. Jha Y, Subramanian RB. PGPR regulate caspase-like activity, programmed ...
  • 55. Selvakumar G, Panneerselvam P, Ganeshamurthy AN. Bacterial mediated alleviation ...
  • 56. Maheshwari DK, Dheeman S, Agarwal M. Phytohormone-producing PGPR for ...
  • 57. Kobraee S, NoorMohamadi G, HeidariSharifAbad H, DarvishKajori F, et ...
  • 58. Abbas G, Hussain F, Anwar Z, Khattak JZK, Ishaque ...
  • 59. Mahmoudi  K. Differences in responses to iron deficiency between ...
  • 60. Saha R, Saha N, Donofrio RS, Bestervelt LL. Microbial ...
  • نمایش کامل مراجع